如果培养基配方中含有：
NaHCO3(g/L) 浓度<1.5时,所需CO2浓度为4%；
NaHCO3(g/L) 浓度处于1.5-2.2时，所需CO2浓度为5%；
NaHCO3(g/L) 浓度处于2.2-3.4时，所需CO2浓度为7%；
NaHCO3(g/L) >3.5时,所需CO2浓度为10%
*有个例外情况。Gibco? DMEM一般遵照Dulbecco的原始配方，含有3.7g/L碳酸氢钠。用户在CO2含量为5-10%的CO2培养箱中使用此培养基已有数十年，通常可以维持生理pH值；这也与所培养的细胞类型有关。随着细胞不断生长，pH值开始不断下降（由于乳酸的代谢性积累）。
2、细胞培养产品的使用：加入血清后的培养基可以使用多久？
通常情况下，加入血清后的培养基可使用三个星期。尽管没有正式的研究支持数据，这是我们研究人员的经验。
3、细胞培养产品的使用：存放于冰箱中的FBS为何会出现沉淀？
Gibco? FBS未经预老化处理。当储存于2至8°C的条件下，血清中可能存在的各类蛋白与脂蛋白（如冷凝集素，纤维蛋白原，玻连蛋白等）会发生聚集，并且形成肉眼可见的沉淀或混浊。这并不会影响血清的使用性能。我们推荐您将FBS储存于–20°C，同时避免反复冻融。
4、细胞培养出现污染：我该如何去除细胞培养基中的支原体污染？
绝大部分情况下支原体污染无法从培养物中去除，只能弃用。不过也许您的培养物具有独特性，您不希望丢弃而试图去除污染。环丙沙星和Plasmocin?据报导适合此种应用。如果对相关实验方案或应用感兴趣，请联系抗生素供应商或参考已发表的文献。请注意支原体很难从培养物中清除，而且容易扩散，所以请对受污染的培养物进行隔离处理，直至支原体被完全清除，另外您的实验室可能也需要彻底净化。
5、我对目前使用的培养基很满意，尽管我向其中添加了10%的FBS。我为何需要换用高级培养基（Advanced Media）？
高级培养基可减少血清用量50%至90%。对于大多数细胞系而言，减少50%的血清用量不会导致任何营养问题。进一步降低血清含量可能会逐渐出现营养问题。如需将血清含量减至50%以上，则血清用量应具体视所用细胞系而定。降低血清用量的好处包括节约成本——特别是在血清价格上涨时期——延长某批血清的使用时间和减少实验条件的批次间差异。
6、哪些细胞可以培养于去外泌体的FBS中，我又该使用何种FBS浓度？
我们专门测试了Jurkat、MCF-7、HeLa、PC3、HEK293与A549细胞，所有这些种类的细胞都生长良好。HeLa细胞对于去外泌体FBS的存在最为敏感。您可能需要对去外泌体FBS的浓度进行调整，以匹配特定细胞系与培养系统的需要。
我们推荐您以10%做为去外泌体FBS应用的起始浓度，在需要时进行上调或下调。同时，去外泌体FBS通过了单次传代后48小时的培养测试和验证。
7、当我将细胞移至新培养瓶中，为何他们不贴壁？
缩短胰酶消化的时间，或使用更少量的胰酶进行处理，也可换用Gibco? TrypLE? Select或Gibco? TrypLE? Express。使用2-5 mL细胞生长培养基稀释胰酶处理体系后，将细胞悬液移至15 mL离心管中。以100 x g离心5-10分钟。
弃去上清液并使用2-5 mL新鲜培养基重悬细胞沉淀。确定细胞数量并按照常规方案将细胞接种入培养瓶，细胞应会正常贴壁。
